rt无损检测工作总结

rt无损检测工作总结（精选12篇）

1.rt无损检测工作总结 篇一

猪繁殖与呼吸障碍综合征病毒RT-PCR检测方法的建立

设计了一对特异性引物,对16头临床症状、病理变化和ELISA检测呈阳性的猪繁殖与呼吸障碍综合征疑似病例的.肺脏、脾脏和淋巴结以及种公猪的精液进行了RT-PCR扩增.结果显示16头样品的相应组织及精液都扩增出特异性基因片段,阳性符合率为100%,8头猪繁殖与呼吸障碍综合征血清ELISA检测为阴性的对照样品中有2头扩增出阳性片段,检出率为25%.RT-PCR检测方法的建立为猪繁殖与呼吸障碍综合征的准确诊断提供了技术手段.

作 者：吴庭才 张武提 李银聚 张春杰 王威 WU Ting-Cai ZHANG Wu-Ti LI Yin-Ju ZHANG Chun-Jie WANG Wei  作者单位：吴庭才,李银聚,张春杰,王威,WU Ting-Cai,LI Yin-Ju,ZHANG Chun-Jie,WANG Wei(河南科技大学,动物科技学院,河南,洛阳471003)

张武提,ZHANG Wu-Ti(宜阳县城关乡农业服务中心,河南,宜阳,471600)

刊 名：河南科技大学学报（自然科学版）  ISTIC PKU英文刊名：JOURNAL OF HENAN UNIVERSITY OF SCIENCE & TECHNOLOGY(NATURAL SCIENCE) 年，卷(期)： 27(6) 分类号：S858.28 关键词：猪繁殖与呼吸综合征   RT-PCR   诊断  

2.rt无损检测工作总结 篇二

目前, 实时荧光PCR、电镜技术、RT-PCR、酶联免疫吸附测定 (ELISA) 等是我国南芥菜花叶病毒的主要检测技术[4,5,6,7,8,9], 但这些技术均有弊端。该文有机结合巢式PCR和实时荧光PCR技术, 建立一套“半巢式RT-Realtime PCR”检测Ar MV的分子技术。

1材料与方法

1.1试验材料

马铃薯黑环斑病毒 (PBRSV) 、马铃薯Y病毒脉坏死株系 (PVYN) 核酸、南芥菜花叶病毒 (Ar MV) 、马铃薯X病毒 (PVX) , 由中国检验检疫科学研究院动植物检疫研究所提供。核酸蛋白分析仪为Bio Photometer (德国eppendorf公司) ;实时荧光PCR试剂盒, 购自美国Invitrogen公司;实时荧光PCR基因扩增仪为ABI PARISM 7000 ( 美国ABI公司) ; 纳米磁珠法植物总RNA提取试剂盒由北京出入境检验检疫局提供;反转录试剂盒 (货号:DRR037A) , 购自大连宝生物公司 (Ta Ka Ra) 。

1.2 Taq MAN探针与引物的设计合成

引物和Taq MAN探针由上海生工合成, 探针3′端标记淬灭荧光染料tetra-methylcarboxyrhoda mine (TAMRA) , 5′端标记报告荧光染料6-carboxy fluorescent (FAM) 。

该研究供设计3 条引物, 包括1 条下游引物及2 条上游引物。上游引物用Ar MVF表示, 其中Ar MVF1 序列为:5′-TGCTGAGTTTGAGGCAGCAA-3′, Ar MVF2 序列为:5-TGGGA AGCCCAACTTCATTT-3, 下游引物用Ar MVR表示, 序列为:5′-CAGTGGTGGGATGGTCAGAAA-3′。Taq Man探针用PVXP表示, 序列为:5′ (FAM) -CGACTTTGCCAGCCTAGATGCAG- (TAMRA) 3′。PCR产物长度Ar MVF2/Ar MVR为73 bp;Ar MVF1/Ar MVR为103 bp 。3 条引物及探针可以组成2 套不同的反应组合, 套1 为Ar MVF1/Ar MVR/Ar MVP, 套2 为Ar MVF2/Ar MVRAr MVP。

1.3 总RNA提取及质量控制

分别从感染上述病毒及健康的葡萄叶片 (CK1) 中用纳米磁珠法植物总RNA提取试剂盒提取总RNA, 为了获得其浓度与纯度值, 测定其OD值 ( 核酸蛋白分析仪Bio Photometer) , 并以此控制核酸质量。

1.4 反转录合成c DNA

用反转录试剂盒DRR037A分别将“1.3”中提取的6 个植物总RNA及DEPC水对照 (CK2) 进行反转录操作, 以合成c DNA, 具体反应体系参考文献[9]。

1.5 实时荧光PCR试验

1.5.1 引物探针特异性试验。模板分别是 “1.4”中合成的7个c DNA, 反应体系:在25 μL体系中分别加入PCR buffer (2 × ) 12.5 μL, ROX 0.5μL, 上游引物Ar MVF1 ( 或Ar MVF2) (15 μmol/L) 1 μL, 下游引物 (Ar MVR) (15 μmol/L) 1 μL, 探针 (Ar MVP) (10 μmol/L) 1 μL, c DNA 2.0 μL, 补充DEPC水至25 μL, 每个c DNA至少设置2 个重复; 循环条件为50 ℃ 、2 min;95 ℃ 、2 min;95 ℃ 、15 s, 60 ℃ 、30 s, 45 cycles; 在ABI PARISM 7000 仪器的96 孔板中进行反应。

1.5.2灵敏度试验。用灭菌后的DEPC处理水将从感染南芥菜花叶病毒 (Ar MV) 的植物叶片中提取的总RNA分别稀释为10-10、10-9、10-8、10-7、10-6、10-5、10-4、10-3、10-2、10-1及DEP水11个梯度, 进行反转录合成c DNA, 然后进行实时荧光PCR灵敏度试验。实时荧光PCR与反转录操作同前所述。

1.5.3 2套引物探针的扩增效率对比试验。为比较这2套引物探针的扩增效率, 用同一个Ar MV病毒c DNA为模板, 分别用套1组合 (Ar MVF1/Ar MVR/Ar MVP) 和套2组合 (Ar MVF2/Ar MVR/Ar MVP) 进行实时荧光PCR试验。实时荧光PCR操作同前。

2 结果与分析

2.1 特异性试验PCR扩增结果

套1 (Ar MVF1/Ar MVR/Ar MVP) 结果见图1, 套2 (Ar MVF2/Ar MVR/Ar MVP ) 结果见图2。 可以看出, 除了在Ar MV的c DNA为模板的反应体系中出现标准的扩增曲线外, 其他5种c DNA模板扩增信号均未出现, 说明2 套引物探针的特异性很好, 与预计符合。

2.2 灵敏度试验PCR扩增结果

用DEPC处理水稀释为10-10、10-9、10-8、10-7、10-6、10-5、10-4、10-3、10-2、10-1、DEPC水11 个梯度, 稀释从带Ar MV的叶片中提取植物总RNA。反转录分别合成c DNA后, 进行实时荧光PCR扩增。套1 和套2 结果见图3、4。可以看出, 当RNA稀释至10-9 (即0.006 fg/μL) 时, 检测不到信号, 因此该方法检测的灵敏度可达10-8, 即0.06 fg/μL植物总RNA。

2.3 2 套引物探针的扩增效率对比试验结果

套1组合 (Ar MVF1/Ar MVR/Ar MVP) 和套2组合 (Ar MVF2/Ar MVR/Ar MVP) 引物探针的扩增效率对比试验结果见图5。可以看出, 这两引物探针的扩增效率几乎完全一样。

3结论与讨论

实时荧光PCR技术将荧光信号的放大功能和PCR扩增系统有机结合起来, 是口岸生物检测中的高新技术。较目前已报道的其他检测技术更快速、准确、灵敏和简便, 在植物检疫中应用前景广阔[10,11]。

目前, 关于南芥菜花叶病毒检测主要是ELISA检测与RT-PCR凝胶电泳方法, 前者易产生假阳性结果, 后者对实验室易造成污染。也有采用实时荧光PCR的报道。本研究建立了一个“半巢式Real-time PCR”检测南芥菜花叶病毒的方法, 检测的灵敏度可达0.06 fg/μL植物总RNA。该方法既提高了检测灵敏度和准确性, 又解决了由于不同方法而导致2 次结果差异大、对结果难以判定的问题, 能有效减少国际贸易中可能出现的贸易争端。

参考文献

[1]洪键, 李德葆, 周雪平.植物病毒分类图谱[M].北京:科学出版社, 2001.

[2]张有才, 陈宪斌, 焦惠燕.南芥菜花叶病毒[J].植物检疫, 1994, 8 (5) :284-285.

[3]中华人民共和国进境植物检疫性有害生物名录[Z].2007.

[4]南芥菜花叶病毒检疫鉴定方法:SN/T 1150-2002[S].北京:中国标准出版社, 2002.

[5]邓丛良, 梁新苗.郁金香上南芥菜花叶病毒的分子鉴定[C]∥中国植物病理学会学术年会论文, 2006..

[6]吴兴海, 邵秀玲, 张凤娟, 等.南芥菜花叶病毒分子生物学快速检测方法的研究[J].江西农业学报, 2007, 19 (7) :34-35.

[7]闻伟刚, 赵秀玲, 翁志平, 等.一步RT-PCR检测南芥菜花叶病毒方法的建立[J].植物检疫, 2003, 17 (6) :331-332.

[8]于翠, 杨翠云, 洪健.从进境水仙上检测出南芥菜花叶病毒[J].植物检疫, 2005, 19 (6) :359-361.

[9]邓丛良, 吕玉峰.应用RT-Real time PCR检测南芥菜花病毒[J].植物检疫, 2008, 22 (2) :80-82.

[10]刘毅, 丁元明, 陈丽梅, 等.进境百合种球南芥菜花叶病毒的检测及分子鉴定[J].植物检疫, 2009 (1) :7-9.

3.宝洁RT上海笔试经验 篇三

RT，带2B笔，计算器 ，铅笔，身份证，记住你的考号!!

如以前经验的总结 ，我先做的数学 ，然后图形，最后逻辑，

心得如下：

图形很多是以前资料的，但有好几道新题，不难。

数学比给的练习题复杂，我数学不好，居然用的时间比逻辑多。

逻辑没有想象的难，一定要根据那个官方准则：“To identify the correct answer, it is essential that you use ONLY the information provided in the paragraph.” 尽量不要想多了，严格根据给的.文段，

然后做完其实剩不了很多时间，所以尽量做的时候细心点，保证正确率。然后切记不要在给的题册上写，会给草稿纸的。 做题时保持清醒的头脑，相信自己，应该就不会有问题。

4.rt绿色环保公益广告词 篇四

2.绿色——永恒的美：学校——永远的家。

3.生命和绿色拥抱 人类与生态共存

4.小草睡觉，请勿打扰。

5.请保护一草一木。

6.芬芳来自鲜花，美丽需要您的呵护

7.红花绿草满园栽，风送花香碟时来

8.花草丛中笑，园外赏其貌

9.花开堪赏直须赏，莫要折花空赏枝

10.来时给你一阵芳香，走时还我一身洁净。

11.欲揽春色入自家，无可奈何成落花。

12.愿君莫伸折枝手，鲜花亦自有泪滴

5.rt无损检测工作总结 篇五

添加语言

若要更改你的 Windows 显示语言或者添加键盘以进行键入，首先要将一种语言添加到语言列表中。

从屏幕右边缘向中间轻扫，点击“设置”，然后点击“更改电脑设置”。(如果使用的是鼠标，则指向屏幕右下角，然后将鼠标指针向上移动，单击“设置”，然后单击“更改电脑设置”。)

依次点击或单击“时间和语言”、“区域和语言”和“添加语言”。

浏览到所需的语言，然后点击或单击它，并将其添加到你的语言列表。

下载并安装语言包

如果希望将一种语言作为你的 Windows 显示语言(此语言就是你在 Windows 和应用中经常看到的语言)，则需要下载语言包。

从屏幕右边缘向中间轻扫，点击“设置”，然后点击“更改电脑设置”。(如果使用的是鼠标，则指向屏幕右下角，然后将鼠标指针向上移动，单击“设置”，然后单击“更改电脑设置”。)

点击或单击“时间和语言”，然后点击或单击“区域和语言”。

点击或单击下面显示的“可用语言包”，然后点击或单击“选项”。

点击或单击“下载”。 下载过程可能需要一段时间，具体取决于你的电脑和语言包的大小。

如果要将该语言作为显示语言，请参阅下一节“更改 Windows 显示语言”。

更改 Windows 显示语言

若要更改 Windows 显示语言(此语言就是你在 Windows 和应用中经常看到的语言)，首先添加一种语言，下载并安装该语言包，然后按以下步骤操作。

从屏幕右边缘向中间轻扫，点击“设置”，然后点击“更改电脑设置”。(如果使用的是鼠标，则指向屏幕右下角，然后将鼠标指针向上移动，单击“设置”，然后单击“更改电脑设置”。)

点击或单击“时间和语言”，然后点击或单击“区域和语言”。

点击或单击要设置为显示语言的相应语言，

点击或单击“设置为主要语言”以将该语言移到列表顶部。 如果该语言可以成为你的 Windows 显示语言，则会看到在该语言下显示“下次登录之后将成为显示语言”。

注销然后重新登录即可完成。

在键盘或输入法之间切换

向语言列表中添加语言时，会同时添加一个键盘或输入法，以便你能够使用该语言键入内容。 你可以通过切换输入法使用添加的任何键盘进行键入。 在键盘或输入法之间切换的步骤：

在标准键盘上，按 Windows 徽标键 + 空格键。

在触摸屏上，点击或单击桌面任务栏中的触摸键盘图标 ，再点击或单击语言缩写，然后点击或单击要切换到的键盘。

触摸键盘中的语言缩写按钮

在桌面任务栏上，在任务栏最右侧的通知区域中点击或单击语言缩写，然后点击或单击要切换到的键盘。

桌面任务栏中的语言缩写按钮

添加语言的键盘布局

如果希望使用与语言附带的键盘不同的键盘，则可以向语言添加键盘布局。

添加语言的键盘布局的步骤

从屏幕右边缘向中间轻扫，点击“设置”，然后点击“更改电脑设置”。(如果使用的是鼠标，则指向屏幕右下角，然后将鼠标指针向上移动，单击“设置”，然后单击“更改电脑设置”。)

点击或单击“时间和语言”，然后点击或单击“区域和语言”。

点击或单击要将键盘添加到的语言，然后点击或单击“选项”。

点击或单击“添加键盘”，浏览你要使用的键盘布局的输入法列表，然后点击或单击要使用的键盘布局。

将键盘设置为默认键盘

若要将键盘设置为默认键盘，以便使用该键盘输入文本时无需切换输入法，请按照以下步骤操作：

通过以下方式打开“控制面板”中的“语言”：从屏幕的右边缘向中间轻扫，点击“搜索”(如果使用鼠标，则指向屏幕的右上角，然后将鼠标指针向下移动，再单击“搜索”)，在搜索框中输入“添加语言”，然后选择“添加语言”。

点击或单击“高级设置”。

6.rt无损检测工作总结 篇六

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 试剂:

RT—PCR试验试剂:0.1%DEPC水 (购自上海生物工程公司的DEPC 1 mL溶于1 000 mL去离子水中, 混匀, 过夜后灭菌备用) 、琼脂糖凝胶 (Agarose琼脂糖0.500 g, 加TBE (0.5X) 50 mL, 加热至溶解, 稍待冷却后加荧光涂料 (Glodview) 3μL) 、裂解液 (澳兰百特诊断中心实验室配制) 、氯仿、异丙醇、75%冷酒精、DNA Marker DL 2 000、RT-PCR试剂盒。

1.1.2 仪器:

20～200μL单道移液器、PCR仪、电热恒温水浴锅、电泳仪器、电子天平、SK-1型快速混匀器等。

1.2 方法

1.2.1 样品处理:

分别取9头病死猪的组织 (肝、脾、肺、肾、脑、淋巴结等) , 加入组织体积3～5倍的生理盐水匀浆, 反复冻融3次。

1.2.2 核酸的提取:

首先, 取样品上清液400μL, 加600μL的裂解液, 加400μL氯仿, 振荡, -20℃沉淀10 min。然后, 12 000 r×10 min离心, 取上清600μL, 加800μL异丙醇, -20℃沉淀30 min。最后, 12 000 r×10 min离心, 弃上清, 用75%的冷乙醇冲洗1次, 冷风将核酸吹干。

1.2.3 反转录 (20μL体系) :见表1。

μL

以上混合体系溶解吹干的核酸, 42℃反转录1 h。

1.2.4 PCR扩增 (30μL体系) :见表2。

放入PCR仪进行扩增, 扩增35个循环, 反应程序为:预变性94℃5 min, 变性94℃30 s, 退火55℃30 s, 延伸72℃1 min, 终延伸72℃6 min。

1.2.5 电泳:

将琼脂糖凝胶倒入电泳槽中, 凝固后点样电泳, 紫外灯下观察结果。

2 结果与分析

本试验中的引物是根据Genband已公布的猪蓝耳病序列设计的, 其电泳后的目的条带大小为605 bp左右。

注:图中1、2、3、4、5、6、7、8、9待检病死猪, M为DL2 000 marker

由图1可以看出, 9头待检病死猪中, 有5头猪呈阳性 (即图中的1、2、3、4、5) , 由此可以看出该批待检病死猪猪繁殖与呼吸综合征发病率较高。

3讨论

试验结果表明, 该批待检病死猪发病率为56%, 由于该病的致死率高, 给养猪业造成很大经济损失, 因此做好此病的综合防治至关重要。可以采用以下防治措施:猪群应加强饲养管理, 供给充足营养, 以增强猪群抗病力。合理免疫, 科学预防。一般情况下, 未免母猪所产仔猪可用猪繁殖与呼吸道综合征乳油剂灭活苗在12日龄时首免1/2头份, 30日龄二免1头份;已免母猪所产仔猪25～35日龄接种灭活苗1头份;后备母猪和哺乳母猪均在配种前半月至1个月免疫1头份[5]。另外, 已发现感染蓝耳病猪只的猪场, 猪只接种疫苗时, 应选用弱毒疫苗[6]。猪舍随时清扫, 定期进行消毒。外买猪应严格检疫, 并隔离饲养。

参考文献

[1]Z.Q.Gao, X Guo and H.C.Yang.Genomic characterization of two Chinese isolates of porcine reproductive and respiratory syndrome virus.Vet Immunol Immunopathol, 2004, 149:1341～1351

[2]陈爱珍.猪蓝耳病的诊断与防治.福建农业, 2008 (1) :24

[3]赵以云.猪蓝耳病的诊断与防治.现代农业科技, 2008 (1) :24.

[4]孙艳明, 赵德明.猪蓝耳病的诊断与防治.中国畜牧兽医, 2007, 34:130～131

[5]鲍顺梅, 张吉平.猪蓝耳病的防治.畜禽业, 2007 (7) :35～35

7.无损检测工作总结 篇七

通过了国防科工委的MT-II职业资格考试一年时间过去了,在单位领导和同事们的支持和帮助下，学习科学理论和业务知识、总结工作经验，培养自身修养，努力提高综合素质，严格遵守厂内各项规章制度，认真履行岗位职责，圆满完成各项任务。

工作三年了，已经能把学习到的理论知识和实际生产工作紧密联系起来，所涉及的知识虽然掌握的还不够全面，但是我知道踏实学习的重要性，并应该继续发扬不耻下问的学习精神，积极跟童师傅学习，现在我虽然具备单独操作，判断试验结果是否符合规范标准要求的能力，可实际工作经验还和师傅们差的好远，在来年的工作中更加需要务实的工作，积累更多的工作经验，以及慢慢掌握遇到问题，处理问题的能力。

今年厂里组织学习《罗文送信》这本书，在繁忙的工作之余，系统的研读了这本书，并深有体会。还和同事们一起探讨了，怎么才能好好的工作，努力的工作，快乐的工作，并把工作当成一种很轻松的事，没有负担，没有焦躁情绪的平和心态以及怎样才能成为和罗文一样的人。

在这半年里我在思想上积极要求进步，牢固树立了质量意识；在纪律上不迟到、不早退遵守公司的各项规章制度；在工作中和师傅们一起完成磁探专业对公司型号、转包产品、新研发产品、返修、定检产品的检测任务。并在今年的型号突击生产中坚持“随叫随到，随到随干”的工作口号，经常和师傅们一起干到深夜，保证型号产品按照

节点完工，有效的配合了生产。同时, 我在干好本职工作的同时能积极协助他人，服从领导的安排，在平凡的工作岗位上，为公司全年生产任务的顺利完成尽了一份微薄之力。在生活中待人和气、谦虚谨慎、尊重老师傅、乐于助人、关心集体、热心公益事业、积极维护单位荣誉。

回顾总结一年的工作，我圆满完成了各项任务，这与领导的支持和同事们的帮助是分不开的，借此机会，我对大家表示由衷的感谢！以上是我一年来的工作总结，如有不足之处，请领导和同事们多多批评、指正。

面对今后的工作，我对自己充满信心，在工作中我将积极主动地学习各类技术文件，不断扩展自己的知识领域，努力搞好工作。争取尽快的分担一些师傅们身上的重担，在生活中更要待人和气、谦虚谨慎、尊重老师傅、乐于助人、关心集体、热心公益事业、积极维护单位荣誉。

8.无损检测工作技术总结 篇八

报考项目: RT 论文题目: 浅谈小径管透照布置的选择

姓 名: 庞 兵

工作单位: 安徽津利能源科技发展有限责任公司

浅谈小径管透照布置的选择

随着近年来电力行业趋势不断上升，射线检测作为无损检测方法的一个重要方法，射线检测在电站安装中具有与其它无损检测方法不可替代的优越性。电站锅炉主要以小口径管对接接头为主，多采用射线检测。笔者近期参与完成了***发电厂(2×1000MW)超超临界燃煤发电机组安装工程的无损检测工作，对射线检测小径管时透照位置的选择有了新的认识和理解。

1.小径管透照在实际应用中暴露的问题：

在某电厂安装项目现场抽查中发现炉管焊缝存在大量的根部裂纹（见附图一、二），而这些焊缝则是已在预制厂检测合格的焊口。为什么会造成这种现象呢？为此笔者分析了产生这种现象原因。该炉管材质为T92规格为Φ51×8mm，检测执行标准JB/T4730.2-2005，技术等级AB级，Ⅱ级合格。在预制阶段由于条件较好，所以按JB/T4730.2-2005标准规定采用椭圆成像法透照，相隔90度透照2次。在这一阶段也发现了少量的根部裂纹，但并未引起检测人员的足够重视。在炉管组装运抵现场后由于现场条件的限制没有采用椭圆成像法透照而是采用垂直透照的方法进行检测，相隔120度透照3次重叠成像，结果发现了大量的根部裂纹。为保证产品质量我们要求对所有运抵现场的炉管按用垂直透照的方法进行100%重新检测，同时要求预制厂在预制阶段也采用同样的方式进行检测。但这一要求似乎并不完全符合JB/T4730.2-2005的规定，检测单位对此也有所顾忌。

2.小径管经常采用倾斜透照椭圆成像的原因 小径管通常是指外直径Do小于或等于100mm的管子，在射线检测中倾斜透照椭圆成像通常是首选。小径管采用倾斜透照椭圆成像可以将源侧和胶片侧焊缝影像分开便于影像的评定及缺陷的定位返修，而且在大多数条件下有较少透照次数，这样既可以减少成本又可以提高检测效率保证工程进度。笔者认为小径管采用倾斜透照椭圆成像检测工艺优化的体现，是质量、费用、进度及返修难易程度相互平衡的共同结果。实践证明此方法确实是一种行之有效地透照方法，在可以实施的情况下也确应采用。垂直透照重叠成像的方法对于根部裂纹、根部未熔、根部未焊透等根部面状缺陷的检出率较高，但发现缺陷后由于分不清是源侧还是胶片侧的缺陷会对缺陷的定位返修造成不便。焊缝表面的不规则也会影像的评定造成一定的影响，此外在检测成本、检测进度上也略逊于倾斜透照，它出常常作为倾斜透照的一种补充方法加以应用。综上原因在射线检测中经常采用倾斜透照椭圆成像。

附图一 3.透照角度对小径管裂纹检出的影响 射线检测中对于缺陷的检出主要是通过裂纹检出角来控制的，它是假想裂纹垂直于工件表面来进行研究的，垂直于工件表面的裂纹也是危害性最大一种缺陷，因此它是射线检测重要控制的缺陷。裂纹检出角分为横向裂纹检出角和纵向裂纹检出角。实验证明，透照角度在10度以下时裂纹的识别情况变化不大，但透照角度超过15度时随着透照角度的增大裂纹不能识别的情况就会增大很多，裂纹的检出率会显著降低。

附图二

在JB/T4730.2-2005中透照方向实际上是对纵向裂纹检出角的控制，但标准并未规定角度的控制范围。而一次透照长度是以透照厚度比K的形式间接的控制横向裂纹检出角的大小。无论是倾斜透照椭圆成像透照2次或3次，还是垂直透照重叠成像透照3次其对横向裂纹检出角的要求是基本相同的，但倾斜透照椭圆成像透照的纵向裂纹检出角要明显大于垂直透照重叠成像透照。按标准规定，椭圆成像时影像开口宽度为1倍焊缝宽度左右，当g（焊缝宽度）≤D0/4时倾斜透照的角度约为25.56度,此时纵向裂纹的检出率将大大下降。此时椭圆成像过大的透照角度可能会导致根部面状缺陷的漏检，因此在可能存在根部面状缺陷时椭圆成像的方法应慎用。

附图三

4.对JB/T4730.2-200

5小径管透照布置的理解

JB/T4730.2-2005标准中射线检测的透照布置分为5条，即透照方式、透照方向、一次透照长度、小径管的透照布置和透照次数。其实后2条仅是针对小径管这一特定检测对象而言的，其含义也包含于前3条之 中：

1）小径管的透照布置无论是倾斜透照还是垂直透照都为双壁双影法。2）小径管的透照方向是通过椭圆的开口度来控制的，倾斜透照时有一定的透照角度，垂直透照时透照就角度为0o。小径管透照布置规定，当同时满足T（壁厚）≤8mm； g（焊缝宽度）≤Do /4时应采用倾斜透照方式椭圆成像，而JB/T4730.2-2005中4.1.2条（透照方向）规定透照时射线束中心一般应垂直指向透照区中心，需要时也可选用有利于发现缺陷的方向透照。因此从这一方面看小径管的透照布置与4.1.2条的 要求是相互矛盾的。3）小径管透照次数是一次透照长度的体现。无论是倾斜透照椭圆成像透照2次或3次，还是垂直透照重叠成像透照3次其透照厚度比K都约为1.7左右。从小径管的K值我们可以看出小径管的K值其实已经不 能够满足标准的要求，标准之所以这样规定只是优化工艺的结果。因此我们对标准的执行也要灵活应用，不能照抄照搬。在检测中如已发现许多根部面状缺陷或对缺陷的检出率存在疑问时应采用垂直透照进行补充检测，在已经发现大量根部面状缺陷时要直接采用垂直透照进行检测。这样才能提高根部面状缺陷检出率来保证产品质量，才能真正做到质量、费用、进度的协调统一，此时的才能算是优化的工艺。

9.rt无损检测工作总结 篇九

1 资料与方法

1.1 研究对象

选择我院感染性疾病科2014年5月—8月收治的手足口病患儿86例, 其中男45例, 女41例;年龄0月~5岁, 平均 (2.50±1.52) 岁, 诊断均符合卫生部《手足口病诊疗指南 (2008年版) 》。

1.2 检测方法

手足口病毒RNA检测采用实时荧光定量PCR法, 试剂盒由广州中山大学达安基因股份有限公司提供。采集患者发病3 d内的咽拭子样本, 用盐水浸湿无菌咽拭子, 适度用力拭抹咽后壁和两侧扁桃体部位, 应避免触及舌部;迅速将咽拭子放入装有1~2 m L生理盐水 (需提前把1~2 m L盐水预先加入到咽拭子管中) 的咽拭子样本采样管中, 以防干燥, 贴上条码送检。经上述处理的样本可4℃暂存并在12 h内送达实验室, -20℃以下低温冷冻保藏, 需长期保存的标本存于-70℃冰箱, 标本应避免反复冻融。标本运送采用冰壶加冰或泡沫箱加冰密封进行运输。

2 结果

2.1 RT-PCR法检测患儿肠道病毒类型结果

本研究采用RT-PCR对86例手足口病患儿咽拭子肠道病毒进行检测, 结果显示, 肠道病毒通用型阳性38例, 阳性率为44.2% (38/86) ;肠道病毒EV71型阳性18例, 阳性率为20.9% (18/86) ;肠道病毒CA16型阳性3例, 阳性率为3.5% (3/86) 。

2.2 不同性别患儿手足口病肠道病毒的检测结果

检测45例男性患儿手足口病EV、EV71、CA16感染情况, EV阳性男20例, 女18例, 男女患儿EV阳性率分别为44.4% (20/45) 和43.9% (18/41) ;男EV71阳性有8例, 女10例, 男女患儿EV71阳性率分别为17.8% (8/45) 和24.4% (10/42) ;男性患儿CA16阳性有1例, 女性患儿2例, 男女患儿CA16阳性率分别为2.2% (1/45) 和4.9% (2/41) 。

2.3 不同年龄阶段患儿手足口病肠道病毒检出情况

有13例<1岁手足口病患儿接受检查, EV阳性有6例, EV71阳性1例, CA16阳性0例, 阳性率分别为46.2% (6/13) 、7.7% (1/13) 、0% (0/13) ;43例1岁~2岁患儿, EV阳性有16例, EV71阳性9例, CA16例阳性1例, 阳性率分别为37.2% (16/43) 、20.9% (9/43) 、2.3% (1/43) ;30例≥2岁患儿, EV阳性有16例, EV71阳性8例, CA16例阳性2例, 阳性率分别为53.3% (16/30) 、26.7% (8/30) 、6.7% (2/30) 。见表1。

3 讨论

手足口病 (HFMD) 是由肠道病毒引起的传染病, 有20多种 (型) 肠道病毒可引发手足口病, 其中以肠道病毒71型 (EV71) 和柯萨奇病毒A16型 (CA16) 最为常见, 春夏是HFMD高发季节, 患者常为儿童, 男性多见[4]。该病临床表现主要有口痛, 厌食, 低热, 手、足、口腔等部位出现小疱疹或小溃疡, 大多数患儿大约1周后自愈, 少数患儿病情发展, 可有心肌炎、肺水肿、无菌性脑膜脑炎等并发症, 个别患儿病情进展快, 甚至导致死亡。HFMD病例数2010、2011年连续两年居我国法定传染病之首, 病死例数在我国法定传染病也居于前列。由于目前临床上尚无特效的手足口病毒疫苗, 也缺乏针对此病毒特异性的治疗药物。因此, 严密监控本地区HFMD病原体流行状况、病毒感染构成比、年龄分布, 对于HFMD的预防治疗均具有重要意义。随着实时荧光定量PCR检测技术的不断成熟, 各医院临床实验室均开展了手足口肠道病毒的定量检测, 肠道病毒RNA的定量检测有快速、简便、特异性强的特点, 且PCR技术可以高效扩增, 具有高敏感性、高特异性、和高精确性的优点;同时应用实时荧光定量PCR技术检测儿童手足口肠道病毒的感染类型载量, 还可以根据病毒载量的多少反映患儿体内的病毒复制水平, 可以帮助临床医师迅速确诊肠道病毒感染的患儿, 及时进行抗病毒治疗, 对于儿童手足口肠道病毒感染的诊断和疗效观察都具有指导意义。本研究中HFMD患儿就诊时间为5月~8月, 且男性45例, 多于女性的41例, 符合HFMD流行病学特征。本研究采用RT-PCR对86例手足口病患儿咽拭子肠道病毒进行检测, 结果显示, 肠道病毒通用型阳性率为44.2%, 肠道病毒EV71型阳性率为20.9%, 肠道病毒CA16型阳性率为3.5%, 提示运城市手足口病毒感染以EV71型为主。男女患儿EV阳性率分别为44.4%和43.9%;男女患儿EV71阳性率分别为17.8%和24.4%;男女患儿CA16阳性率分别为2.2%和4.9%, 可见女患儿EV71感染阳性率高于男患儿。<1岁手足口病患儿, EV、EV71、CA16阳性率分别为46.2%, 7.7%, 0%;1岁~2岁患儿, EV、EV71、CA16阳性率分别为37.2%, 20.9%, 2.3%;≥2岁患儿, EV、EV71、CA16阳性率分别为53.3%, 26.7%, 6.7%, 可见≥2岁患儿病毒检出阳性率最高。

总之, 手足口病传染性强, 无特异性疫苗预防, 也无针对病毒的特效治疗方法, 对0岁~5岁儿童危害严重。为遏制疫情蔓延, 要不断检测本地区儿童手足口病肠道病毒感染情况, 我市手足口病病原以EV71型为主, 女患儿EV71感染阳性率高于男患儿, ≥2岁患儿病毒检出阳性率最高, 应根据检测结果做到早预防、早发现、早诊断、早治疗, 采取果断措施, 遏制疫情蔓延。

参考文献

[1]杨海英, 王冯彬, 王江蓉, 等.98例手足口病流行特征与临床分析[J].微生物与感染, 2009, 4 (1) :22-25.

[2]马亦林, 李兰娟.传染病学[M].第5版.上海:上海科学技术出版社, 2011:137-144.

[3]郭雪, 郑焕英, 莫艳玲, 等.2008年广东省儿童手足口病病原学监测[J].中华疾病控制杂志, 2009, 13 (3) :270-272.

10.MT无损检测工作技术总结 篇十

南京佳业检测工程有限公司 二O一二年六月 技术工作总结

我于2000年毕业于湖南省劳动人事学校无损检测技术与应用专业，毕业后一直坚持自学，在2008年取得由湖南大学主考的机电一体化工程专业大专文凭。从2002年到2007年这五年里，我在广东华泰检测科技有限公司茂名项目部工作，主要从事板材、管材入库检验中的无损检测工作部分以及压力管道安装无损检测。2007年2月至2009年2月，在海南赛福特检测科技有限公司工作，主要负责化工设备安装的无损检测管理工作。2009年3月至2009年8月，任岳阳市长达无损检测有限公司南宁项目部技术负责人，参与了上十台1000M3以上球形储罐的超声、磁粉检测工作。2009年9月至今任南京佳业检测工程有限公司UT检测责任师，全面参与了扬子-巴斯夫二期A3区的RT检验和公司的UT检测质量管理工作。参加工作以来，时刻不忘向身边经验丰富的前辈学习，以提高自己的专业知识和业务能力，利用一切机会扩大自己的知识面，充实自己的理论知识和实践经验。经过多年的学习，专业水平有了一定的提高，也积累了一些射线检测的工作经验。

下面就我在1000M3液化石油气球罐定期开罐检验时，用浮排代替脚手架时，做罐内表面磁粉检测方面的技术认识进行一些总结，恳请老师指导。

一、背景概述

根据TSG R0004-2009《固定式压力容器安全技术监察规程》的规定，压力容器一般应当于投用3年内进行首次全面检验，即使是安全状况等级最好的压力容器，一般每6年也要进行一次全面检验。而每次全面检验，置换、清洗、喷砂除油漆、搭脚手架等等，工作量非常大。特别是罐内脚手架的搭设，由于下人孔离地面的高度不大，搭设脚手架的钢管进出很不方便，再加上人孔比较小（φ500左右），只能同时容纳两个人一起工作，所以搭设罐内脚手架的劳动强度特别大、工期也拖得比较长、成本自然也低不了。为了很好的解决这一问题，有企业建议用浮排代替脚手架做罐内表面的检测，具体方案是：开罐后，检验人员进入罐内将下极板和不用搭设脚手架能检测到的位置检测完，然后将搭设浮排的材料从下人孔送入罐内，在罐内搭建好浮排，然后封闭下人孔，向罐内注水，使浮排上浮，等浮排上升到预定位置后停止注水，检验人员从上人孔顺绳索悬梯下到浮排上，划动浮排绕罐壁一周进行检测，检测完后，检验人员撤离，再次向罐内注水，如此反复直至全部检验工作完成。

二、面对的问题

以上建议方案是很好的解决了罐内搭设脚手架的问题，但是却给检测带来了不方便。首先是检验人员安全的问题，其次是技术方面也带来了挑战。比如：环境潮湿对用电安全带来了隐患、罐内表面凝结水汽，无法使用反差增强剂、人员有可能落水、下人孔封闭通风不好，罐内空气质量差等等。

三、问题的解决

1、为了防止人员落水，浮排必须搭建护栏，浮排的浮力必须最够大，人员穿救生衣，系救生索，且浮排应由有丰富驾船经验并熟悉水性的人员操控，在球罐的中轴线（上下人孔连线）上有固定浮排的管或钢丝绳。

2、每次进罐检验之前必须测试罐内空气质量，只有空气质量达标才能进入。在上人孔加装强制送风装置并用软管将风送到接近水面的位置，所有进罐人员必须带防尘口罩。上人孔设专人监护，进罐和出罐必须记录并由当事人签名确认。

3、引入罐内的电源必须加装漏电保护开关，在罐内应使用的防暴打磨机，罐内电缆不得有接头。

4、磁粉探伤机使用CDX-Ⅲ型磁粉探伤机，交叉磁轭，并且磁粉探伤机主机也放在罐外，主机与交叉磁轭之间的连接电缆必需加长到可以检测到罐最下层的长度，对于1000M3球罐此电缆长度最好大于16米。由于电缆加长了，电阻随之加大，通过磁轭的电流会减小，提升力也会随之减小，所以，用于此检测方案的磁粉探伤机必须定制。

11.rt无损检测工作总结 篇十一

根据《中华人民共和国放射性污染防治法》、《放射性同位素与射线装置安全和防护条例》、《放射工作人员健康管理规定》等法律法规的规定，按照环保部门对辐射安全防护管理的要求，结合我公司实际，从做好放射装置安全管理着手，建立和完善辐射防护管理制度，落实辐射防护措施，加强辐射监测，辐射防护管理工作不断得到改进，现将我公司自2008年取得辐射安全许可证至今安全防护工作总结如下：

我公司现有Ⅱ类射线装置三台，分别为理学250EG-S3、理学300EG-B2F、比利时SITM-X180-360，一座探伤透照室100m^2.我公司配置个人辐射音响仪TH-2000四台，保证每个作业组得到配置，固定的计量率检测仪WF-1000一台，安装在透照室内。便携式 X/γ辐射仪JB4000有铅防护服2套，个人剂量卡12枚。

我公司对辐射操作人员佩戴个人剂量计，根据国家法律规定定期送北京蓝尔辐射监测技术有限公司进行测量，以确保监测数据的真实性和准确性。

对放射操作人员进行健康监测，一是上岗前健康体检，上岗后定期体检，几年来坚持在克拉玛依防疫站每年进行一次体检。

在做好上述工作的基础上，我们还制作了警示牌、警示标记，配备了安全绳，警示灯等警示用品，在野外作业时必须做好安全警示措施，并及时通知各相关单位及人员。

几年来公司高度重视辐射安全防护工作，成立了以分管领导为组

长的“放射性安全防护领导小组”全面负责公司放射性安全防护管理工作，组织对射线装置设备使用、贮存，培训教育放射工作人员，宣传放射防护知识，监督执行辐射安全防护管理规定执行，检查设备及其场所环境，及时排除放射故障和安全隐患。

公司五年来建立和完善了辐射防护安全管理各项制度，制定了《射线机操作规程》、《辐射防护和安全保卫制度》、《设备维护维修制度》等。为有效应对可能发生的放射事故，确保有序地组织开展事故 救援工作，最大限度地减少或消除事故 和紧急情况造成的影响，制定了《放射事故应急预案》，成立了以公司主管领导为组长的应急处理领导小组，明确了可能发生事故就急处理的职责、组织指挥、工作程序等。

各级环保部门每年的例行监督检查中提出的问题我们都积极整改，在他们的帮助下，各项设施及制度都更加完善，尽管我公司的辐射防护工作有了很大改进，但也还存在一些不足，今后，我公司要进一步在防护、监测设施设备上加大投入，在管理上加大力度，强化监测、防护、安全意识，确保人员安全。

2013年5月8日

12.rt无损检测工作总结 篇十二

1 材料与方法

1.1 病料

福建某规模猪场送检的2头患猪 (未注射猪瘟和猪蓝耳病疫苗) , 剖检观察后采集肺脏、脾脏、淋巴结等材料, -20℃保存备用。

1.2 试剂

Taq酶、dNTP、MgC12、反转录酶MM-LV、DNA Marker、Trizol试剂盒、蛋白酶K等均购自大连TAKARA公司。

1.3 引物设计与合成

CSFV引物和PRRSV引物的设计在参考CSFV和PRRSV美州株全基因序列基础上, 利用Primier5.0和Oligo 6.0软件设计合成了一对扩增CSFV的引物P1、P2, 其片段大小为508 bp;一对扩增PRRSV的引物P3、P4, 其片段大小为400 bp。

引物P1:5’-GCTCCTGGTTGGTAAGCTCGG-3’;引物P2:5’-TGATGCTGTCACACAGGTGAA-3’;引物P3:5’-ATGGCCAGCCAGTCAATCA-3’;引物P4:5’-TCGCCCTAATTGAATAGGTG-3’

以上引物均由大连TAKARA公司合成。

1.4 RNA和DNA提取

取患猪的肺、淋巴结、肾等组织, 无菌条件下剪取约2 g的组织病料, 加入3倍体积的TE缓冲液研磨成悬液, -20℃反复冻融2～3次, 12 000 r/min离心10 min。吸取研磨病料上清200μL, 加入800μL Trizol, 混匀10次, 室温静置5 min, 同时加入70μL乙酸钠和200μL氯仿:异戊醇 (24:1) , 剧烈混匀2 min, 室温静置15 min后, 于4℃12 000 r/min离心15 min。缓慢吸取上清600μL转入无菌小管中, 加入等量异丙醇, -20℃静置30 min, 12 000 r/min离心15 min, 弃上清, 加200μL70%乙醇进行洗涤, 于4℃12 000 r/min离心15 min, 弃去上清, 超净台干燥25 min, 用30μL DEPC水溶解沉淀, -20℃保存。DNA的提取按常规方法进行。

1.5 RT-PCR

1.5.1 RT反应体系

分别取DEPC水1.25μL, 5×MMLV Buffer 2μL, 25 mgMgCl21μL, dNTP mixture1μL, RNase inhibitor 0.25μL, MMLV 0.5μL, 随机引物1μL, RNA样品模版3μL。组成10μL体系进行RT反应。RT反应条件为:30℃10 min;42℃1 h;99℃5 min;4℃保存。

1.5.2 PC R扩增体系

无菌水13.2μL;10×PCR Buffer (含MgCl2) 2μL;dNTPmixture 1.6μL;Taq酶0.4μL;上游引物0.4μL;下游引物0.4μL;RT反应产物2μL, 组成20μL体系进行扩增。CSFV的反应程序:95℃5 min、94℃1 min、50℃1 min、72℃1 min35个循环, 72℃10 min, 4℃保存, 片段大小为508 bp;PRRSV的反应程序:95℃5 min, 94℃1 min、53.5℃1 min、72℃1 min 35个循环, 72℃10 min, 4℃保存, 片段大小为400 bp。反应结束后, PCR产物于1%琼脂糖进行凝胶电泳, 采用自动凝胶成像扫描仪进行拍照。PRV、PCV及PPV的检测分别参照文献[6,7,8]。

2 结果

2.1 临床症状与病理变化

主要表现为保育猪精神沉郁, 体温升高 (40～41.5℃) 、扎堆、腹泻、皮肤发绀或苍白、消瘦。急性感染的猪只于3～5 d死亡, 未死亡猪群的病程约13 d。发病率约为75%, 死亡率约为23%, 用多种抗生素和磺胺类药物治疗, 效果不佳。剖检可见病死猪全身淋巴结肿大, 切面呈均白色、淡黄或蓝紫色相间;肾脏色泽变淡、质地变脆, 个别有针点状出血点;肝脏呈土黄色;肺脏病变不明显, 个别呈弥漫性间质性肺炎和斑点状出血。

2.2 RT-PCR和PCR检测

从组织病料中扩增出两个条带, 其大小分别为508 bp和400 bp, 这与预期的CSFV和PRRSV的片段大小相符合, 而PRV、PCV、PPV检测为阴性, 见图1。将该片段克隆于T载体, 并经序列分析, 结果证明分别为CSFV和PRRSV。

注:1.Marker DL 2000;2.CFSV;3.PRRSV;4.PRV;5.PCV;6.PPV

2.3 细菌学检查

分别取病死猪的肺、肝、脾、肾、淋巴结、脑等组织进行涂片染色镜检, 未发现可疑致病菌;将病料进行常规细菌分离培养, 也未见细菌生长。

2.4 防控

根据临床症状、病理变化及实验室诊断, 确诊为猪瘟与猪蓝耳病混合感染。对于未发病的猪群, 则通过不同日龄保育猪的猪瘟抗体检测, 根据抗体水平及时调整疫苗免疫时间和免疫剂量, 同时增加15日龄哺乳小猪的蓝耳病疫苗免疫。对于发病的猪群, 则通过紧急接种猪瘟疫苗和蓝耳病疫苗, 强化药物保健, 提高饲养管理水平等综合防控措施, 20 d后疫情最终得到有效控制。

3 讨论

1) 根据临床症状和实验室诊断结果表明, 该猪场流行的疾病为猪瘟和猪蓝耳病混合感染。众所周知, 近年来, 猪群疫病的一个主要流行特点是混合感染居多, 如本实验室2011年共检测猪瘟病毒、猪蓝耳病病毒、猪伪狂犬病毒和圆环病毒等病原的规模猪场102个, 其中出现猪瘟与蓝耳病混合感染的猪场有31个, 占猪场总数的30.4%。混合感染使得猪群的发病情况更加复杂, 疫病预防和控制更加困难, 发病、死亡猪群增多, 养殖户的损失更加惨重, 这是目前养猪业遇到的头疼的问题。因此, 根据当前猪群疫病较复杂的流行特点, 做好各种疫苗免疫工作, 确保疫苗免疫效果, 搞好生物安全措施, 及时清除传染源, 切断传播途径, 加强猪群饲养管理, 提高疫病综合防控措施等是减少疫病发生、提高养猪效益的更有效途径[9]。

2) 猪瘟和猪繁殖与呼吸道综合征这两种疫病已证实是引起猪免疫抑制的主要疫病, 除对养猪生产造成直接危害外, 更为重要的是它们均可损害猪的免疫器官和免疫细胞, 造成细胞免疫和体液免疫的抑制, 大大降低猪只抵抗力, 为其他病原的侵入打开了门户, 导致继发其他疫病或与其他病原体混合感染, 这可能是近几年规模猪场猪病复杂化的原因之一[10]。

3) 2006年我国暴发的猪无名“高热病”, 后证实主要是由一种变异的猪繁殖与呼吸道综合征病毒引起的, 称之为高致病性猪蓝耳病, 目前该病引起了国家各部门的高度重视, 并成国家强制免疫的疫苗之一。本次发生的疫情虽然不是猪蓝耳病变异毒株, 但也应该引起基层兽医人员和养殖户的广泛注意, 根据各场的实际情况, 制定猪蓝耳病的防控措施。鉴于目前猪场疫病复杂, 多为混合感染引起, 在临床症状和病理变化上难以区分, 因此, 建议猪场平时应加强疫病监测和检测意识, 一旦发生疫病暴发, 须尽快采样送检, 进行实验室检验, 查清病因, 及时采取防治措施, 避免产生不必要的损失。

参考文献

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[5]周伦江, 王隆柏, 王伟, 等.变异猪繁殖与呼吸综合征病毒FJ06A毒株的分离和致病性[J].福建农林大学学报, 2011, 40 (6) :618-623.

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